常见问题解答
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Q:
DNA Assembly Mix 到底是什么原理?和传统酶切连接有什么区别?
A:依靠DNA片段与线性载体末端15~25 nt同源序列配对,Mix内复合酶体系同步完成外切补平、缺口连接,无需额外酶切、去磷酸化、末端补平,直接一步重组,无多余碱基残留,真正实现“无缝”拼接;允许将一个或多个 DNA 片段插入到线性化载体的几乎任何位置,且不依赖于特定序列中限制性位点的存在,相比传统酶切连接克隆能更高效地连接更多DNA片段,一步反应克隆速度更快。
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Q:
DNA Assembly Mix 最多能同时拼几个片段?
A:DNA Assembly Mix系列依赖于同源臂的互补配对,当片段过多时,同源臂易发生错配导致连接失败或错误连接,因此不建议一次性连接大量片段,片段较多时,可分步连接。经测试,DNA Assembly Mix Ultra适用于插入≤10个片段的连接场景,DNA Assembly Mix Mono适用于插入≤3个片段的连接场景。
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Q:
最佳克隆位点选择?
A:应避免选择克隆位点上下游 50 bp 内有重复序列的区域。并且克隆位点上下游 20 bp区域内 GC 含量尽量在 40%~60%范围内。
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Q:
同源臂要如何设计?
A:一般推荐15~25 bp。当重组转化子产物>10 kb以上时,推荐按20~25 bp。
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Q:
引物怎么设计?
A:具体的操作指南详见:熬过夜的分子实验人必看!Gibson无缝克隆实操干货
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Q:
片段和载体的比例怎么算?加多少才合适?
A:摩尔比是关键!载体:插入片段 = 1:1 ~ 1:5,常用1:2。片段载体摩尔比过大时反而会降低连接效率,比例越大,降低越严重。对于单片段插入,片段:载体=20:1时连接效率约为2:1时的20%,片段越多,连接效率下降幅度越显著。可使用在线无缝克隆片段载体加入量计算表。
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Q:
最小可以插入多小的片段?最大多少?
A:最小建议 50 bp 以上,过短的片段可能会被核酸外切酶完全切除掉。最大可用于全长26 kb质粒构建,片段越大,构建难度越大。
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Q:
可以使用ssDNA进行同源重组连接吗?
A:DNA Assembly Mix Ultra(EG24204)可以允许60 nt左右 ssDNA 进行同源重组。
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Q:
反应温度和时间到底是多少?
A:50℃孵育5~60 min。1~2片段,推荐 5~15 min;3~5片段,推荐30 min;载体骨架>10 kb或者插入片段>4kb,推荐30~60 min。
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Q:
为什么反应温度是50℃而不是37℃?
A:主要是平衡Mix内复合酶的活性;较高温度抑制外切酶过度降解 DNA,同时适配短同源臂特异性退火;37℃会造成Mix内复合酶的效率不足,重组效率显著下降。
